以前所介紹的徠卡體視顯微鏡各種方法都是觀察生物組織自然表面的方法，而這里要介紹的是用徠卡體視顯微鏡掃描電鏡觀察細胞內部與實質性器官內部的方法。該方法由日人田中敬一始建，稱割斷法。其含義是用刀借助切斷包埋劑而切開組織細胞，使其內部結構暴露，從而進行觀察。以樹脂割斷法為例，簡要介紹如下：

 

樹脂割斷法是zui早創始的割斷法。常用的樹脂為Arald比（在一300c固化），也可使用Epon812（一80℃固化）。的方法的要點是用樹脂包埋后，不要使樹脂聚合，而是在低溫下使之固化。割斷后恢復到常溫時用有機溶劑再洗去樹脂。樣品的取村、固定、脫水過程與透射電鏡標本全同。脫水后的樣品經氧化丙烯置換后放入膠囊中。樣品放入前膠囊內預先裝好村脂。與透射電鏡樣品制備不同的是只需樹脂本身，而不加增塑劑與聚合劑等。樹脂對樣品的浸透也不必*充分，浸透不充分的樣品有時會給出有趣的斷面。一般說來經過一夜的浸透后便可將膠囊放至低溫冰箱、干冰或液氮中固化，然后將樣品“割斷”。割斷的步驟是先在冷凍的膠囊表面橫劃一溝痕將單面剃須刀片或多葉木工刀的刀刃垂直放在溝疽內，用一木梯以適當的力量敲擊刀背，膠囊被敲斷時其中的樣品隨之震裂。樣品的斷裂面如玻璃被割開那樣光潔。將斷裂的膠囊投入氧化丙烯中，使樹脂镕去，樣品離開放囊。更換數次氧化丙烯使樹脂*滑除，然后樹樣品移入醋酸異戊6中進行臨界點干燥。

 

如果樣品以苯乙烯樹脂做為包埋劑，再行割斷法做掃描電鏡觀察是十分方便的。因為苯乙烯聚合后，氧化丙烯及醋酸異戊酌等很容易將其溶解，多次更換溶劑便可將苯乙烯清除干凈。因此，在制做透射電鏡標本時，多做出幾個包埋膠囊樣品，待聚合后，按上述方法割斷，將割斷好的樣品放在氧化丙烯中，約2小時后便可經酷酸異戊酷置換、臨界點干燥。

 

除樹脂割斷法外，尚有有機溶劑（酒糟、酷酸異戊圈等）割斷法；水溶性包埋劑（二甲基亞礬、甘油等）割斷法及其它（冷凍、氟里昂等）割斷法，操作都很容易。再以酒精割斷法為例：樣品固定后用酒精脫水，當脫水完成后，將樣品投入預先裝有無水乙醇的膠囊中（避免出現氣泡）。將膠囊放在低溫裝置內使乙醇固化。進行樣品割斷。割斷的樣品立即進入置于室溫的無水乙醇中，待乙醇融化后移入醋酸異戊酷、進行臨界點干保。

 

需指出的是經割斷法制備的標本需要用高分辨率的掃描電鏡（如場發射電子槍掃描電鏡）進行觀察。一般的掃描電鏡分辨率低于透射電鏡，若用掃描電鏡割斷法觀察組織、細胞的內部結構，以和透射電鏡團相對比，必須用場發射電子槍掃描電鏡。由于掃描電鏡立體感較強，割斷樣品在鏡下顯現出高爾基扁平囊與大泡、小泡的空間分布；線粒體峭像隔板一樣伸展；核糖體像小蘑菇一樣附著在內質網“板”上。盡管如此，有些學者認為割斷法并未提供細腦結構的新信息。因此該方法應用不廣泛。

 

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